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蛋白定量與提取到底是怎么一回事兒?來看看吧

更新時間:2023-06-09  |  點擊率:1234
  蛋白定量
  1、蛋白濃度測定
  蛋白定量的方法有很多種,應(yīng)用較多的主要有兩種:BCA蛋白定量檢測法和Bradford蛋白定量檢測法,市售的蛋白定量試劑盒也多基于上述兩種檢測方法而開發(fā)的。兩種方法均需配制蛋白標準品,蛋白與定量試劑經(jīng)過一定時間的反應(yīng)(BCA法反應(yīng)為37℃、20-30min,Bradford法反應(yīng)一般為37℃,5min),酶標儀讀取樣品的OD值,繪制的蛋白標準曲線,依據(jù)標準曲線計算WB蛋白的濃度。兩種檢測方法筆者均有使用經(jīng)驗,相比BCA法,Bradford法不僅節(jié)省反應(yīng)時間,也無需配置反應(yīng)試劑,簡單、快速、好用,筆者推薦Bradford法測定蛋白濃度。
  嚴格來說,每次的蛋白濃度測定均需配制新鮮蛋白標準品,保證每次測到的蛋白濃度的準確性。然而,WB法評估蛋白表達水平本身就是一種半定量或者相對定量,因此在實際蛋白樣本準本及濃度測定時只需保證均一性即可,即使用同樣的標準曲線計算同一批蛋白的濃度,如果計算準備即可保證蛋白上樣時內(nèi)參水平基本一致。因此,在實際操作中我們只需測定一次標準品的OD值、繪制標準曲線,即可用此曲線來計算后續(xù)實驗蛋白的濃度,節(jié)省時間和試劑。
  2、蛋白濃度的調(diào)平
  有研究者喜歡計算添加loading buffer及變性以后的蛋白終濃度和上樣體積,然后在蛋白上樣時用loading buffer配平,保證上樣體積基本一致。而筆者更喜歡用loading buffer和蛋白裂解液調(diào)整蛋白濃度到基本一致(一般為1-2ug/ul)以后再變性,如此蛋白上樣時只需使用相同體積的蛋白樣品即可,筆者經(jīng)驗是這樣的方法相對省時且不容易出錯。
  蛋白提取
  1、蛋白裂解液與裂解環(huán)境
  現(xiàn)如今,商業(yè)化的蛋白裂解有很多中,有強效的、裂解時間短(約5-10min);也有普通的、裂解時間尚可(約30min);也有強效的,裂解時間極短(小于5min)。其中,上述裂解液的裂解環(huán)境,一般推薦為冰上或者4℃裂解,減少蛋白降解;而在蛋白裂解液中也推薦加用磷酸酶抑制劑和蛋白酶抑制劑,抑制細胞內(nèi)酶對蛋白的自然降解。
  對于普通蛋白的提取,如實驗時間無特殊,選用普通的蛋白裂解液、冰上裂解即可;對于極易受環(huán)境影響的蛋白(比如低氧相關(guān)蛋白,HIF-1等),研究報道將細胞從低氧培養(yǎng)箱中取出2-3min即可影響HIF-1表達,因此宜選用強效蛋白裂解液,并在低氧培養(yǎng)箱(37℃)中快速裂解。
  2、組織蛋白提取
  在組織蛋白提取過程中,一般推薦加用蛋白裂解液(磷酸酶和蛋白酶抑制劑)后,冰上研磨、勻漿化處理組織。組織來源不同,蛋白的產(chǎn)出亦不相同。歡迎各位留言,分享經(jīng)驗,比如1mg組織能產(chǎn)出多少蛋白。
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